Что значит сапрофитная микрофлора в бакпосеве
Микрофлора полости рта
Последнее обновление: 11.11.2021
От состояния микрофлоры полости рта зависит не только здоровье зубов и десен, но и работа органов пищеварения, иммунной и других систем и органов. Давайте разберемся, что представляет собой эта часть организма, что влияет на состояния полости рта и как быстро восстановить нормальную работу микрофлоры.
Что представляет собой микрофлора полости рта?
Удивительно, но во рту здорового человека живет примерно 160 видов микроорганизмов. Вам, наверное, приходилось слышать о том, что «рот — это самое грязное место в организме». Отчасти это утверждение верно: ротовая полость — один из наиболее заселенных отделов тела человека.
Микроорганизмы попадают в ротовую полость с пищей и водой, а также из воздуха. Именно во рту наблюдаются самые благоприятные условия для развития бактерий. В этой части тела всегда стоит равномерная влажность и температура (примерно 37 °С). Обилие питательных веществ, достаточное содержание кислорода, наличие складок в полости рта, межзубных промежутков и десневых карманов, слабощелочная pH провоцируют размножение различных бактерий.
Микроорганизмы неравномерно распределяются в полости рта. Максимальное их количество наблюдается на поверхности зубов и на спинке языка. В одном грамме зубного налета содержится примерно 300 миллиардов микробов, а в слюне — примерно 900 миллионов на 1 миллилитр.
Можно очень долго перечислять все виды бактерий, заселяющих микрофлору полости рта. Важно понимать, что каждый человек уникален, и для оценки «нормальности» микрофлоры нужно знать особенности конкретного организма.
Например, в одном случае большое количество лактобактерий в полости рта будет сохранять зубы, а в другом — образование большого количества молочной кислоты в процессе их жизнедеятельности задержит рост других важнейших микроорганизмов. Снижается число стафилококков, дизентерийных и брюшнотифозных палочек, активизируются кариозные процессы, и микрофлору полости рта придется восстанавливать.
Нарушение микрофлоры полости рта: причины
Дисбактериоз ротовой полости могут спровоцировать самые разные заболевания и проблемы. Нарушение условно-патогенной микрофлоры полости рта чаще всего вызывают такие проблемы, как:
Стадии дисбактериоза
В зависимости от степени развития заболевания стоматологи различают четыре стадии дисбактериоза:
Для запущенных форм дисбактериоза характерны такие симптомы, как:
Методы восстановления микрофлоры полости рта
Лечение дисбактериоза зависит, в первую очередь от характера возбудителя, который определяется на основании экспертизы в стоматологии.
К сожалению, зачастую постановка диагноза при дисбактериозе бывает затрудненной, так как на начальном этапе болезнь никак не проявляет себя. При малейших подозрениях на заболевание стоматолог направляет пациента на мазок с поверхности слизистых, анализы крови и мочи.
В зависимости от диагностированной причины дисбактериоза стоматолог может назначить следующие методы лечения заболевания:
В редких случаях назначаются противогрибковые средства и антибиотики.
Как правило, длительность лечения дисбактериоза составляет 2-4 недели и зависит от состояния здоровья пациента, количества очагов воспаления и имеющихся осложнений заболевания.
Надежным помощником в борьбе с дисбактериозом станет пробиотический комплекс АСЕПТА PARODONTAL*, источник лактобактерий для восстановления микрофлоры полости рта. Этот уникальный комплекс с запатентованными штаммами лактобактерий и витамином D обладает способностью эффективно восстанавливать микрофлору полости рта. Комплекс нормализует бактериальную флору в ротовой полости, устраняет неприятный запах изо рта и препятствует образованию биопленок патогенных микроорганизмов.
Для улучшения эффективности назначенной терапии стоматологи рекомендуют отказаться от вредных привычек (хотя бы на время лечения), пересмотреть рацион, уделив внимание растительной пищи и обязательно ухаживать за полостью рта после каждого приема пищи.
Возможные осложнения дисбактериоза
Каждому пациенту важно внимательно следить за состоянием микрофлоры полости рта. Отсутствие лечения дисбактериоза может привести к таким неприятным заболеваниям, как:
Кроме того, научно доказана тесная взаимосвязь состояния микрофлоры полости рта с состоянием сердечнососудистой системы. В 2008 году в США была доказано, что заболевания периодонта как источник хронического воспаления являются независимым фактором риска возникновения ишемической болезни сердца (ИБС).
Итак, теперь вам известна роль нормальной микрофлоры полости рта в организме человека. Относитесь к себе внимательно, и ваш здоровый организм будет радовать вас каждый день.
Клинические исследования
Проведенные в 10-ом отделении Cтоматологии и челюстно-лицевой хирургии Стоматологического факультета Международного университета Каталонии, доказали, что применение лактобактерий помогает снизить болевые ощущения и трудности с приемом пищи после удаления зубов у взрослых пациентов.
Эффективность применения комплексной терапии в лечении заболеваний пародонта. (кафедра пародонтологии СФ ГБОУ ВПО МГМСУИМ.А.И.Евдокимова. Москва.)
Немерюк Д.А.- доцент, к.м.н., Дикинова Б.С.- аспирант кафедры пародонтологии СФ Царгасова М.О.- аспирант кафедры пародонтологии СФ Яшкова В.В.- аспирант кафедры пародонтологии СФ
кафедра пародонтологии СФ ГБОУ ВПО МГМСУИМ.А.И.Евдокимова. Москва
Что значит сапрофитная микрофлора в бакпосеве
Процесс существования патогенных бактерий в естественных экосистемах в настоящее время мало изучен. На самом деле автономное обитание в почве или воде многих патогенных бактерий и грибов, вызывающих инфекционные болезни человека и животных, закономерные и многообразные связи с почвенными и водными организмами делают их полноправными сочленами естественных экосистем, главным образом, почвенных и водных [5]. Listeria monocytogenes относится к возбудителям сапрозоонозов и обладает двойственной (сапрофитной и паразитической) природой, благодаря чему способна существовать как в эндотермных, так и в эктотермных организмах, растительных объектах, а также в почвенной и водной средах. Обитание L. monocytogenes в почве является известным фактом, что доказано как выделением возбудителей сапрозоонозов из этих субстратов [4, 6], так и в модельных экспериментах [1]. В настоящее время установлено, что на существование этих микроорганизмов в почвах оказывают влияние как абиотические факторы среды [7], так и биотические [8, 10].
Присутствие микроорганизмов в той или иной природной зоне определяется не только условиями внешней среды, но и наличием контроля со стороны других микроорганизмов. Многие исследователи [2, 3] считают, что соединения, продуцируемые микроорганизмами, могут действовать как внутри- или межвидовые регуляторы микробных сообществ. При этом отмечено как стимулирующее, так и ингибирующее действие веществ микробного происхождения на размножение микроорганизмов [8, 11].
Возможность того, что естественная микрофлора почвы может оказывать положительное влияние на сохранение патогенных микроорганизмов в почве, представляет особый интерес для исследований в этом направлении. В связи с этим, целью данной работы являлось изучение влияния сапрофитной микрофлоры почвы на размножение L. monocytogenes.
В работе использовали штаммы сапрофитных бактерий, выделенные нами из естественно сложившейся микробной ассоциации бурой лесной почвы, которая является природным очагом листериозной инфекции [9].
Всего было выделено из почвы 32 штамма сапрофитных бактерий, различных по своим культуральным свойствам. Идентификацию активных штаммов сапрофитных бактерий проводили с помощью физиолого-биохимических тестов и специфических праймеров в ПЦР-реакции.
Для экспериментальных исследований было использовано 10 эпидемически значимых штаммов L. monocytogenes, взятых из музея ФГБУ «НИИЭМ имени Г.П. Сомова» СО РАМН, типичных по своим культуральным, серологическим и биохимическим свойствам.
Действие газообразных метаболитов испытуемых культур на рост тест-культур исследовали экспресс-методом Л.С. Тирранен (1980) в нашей модификации. Культура, действие летучих веществ которой изучали, далее именуется испытуемой, та, на которой проверялось это действие – тест-культурой. Все сапрофитные бактерии поочередно исследовались как испытуемые, все патогенные бактерии использовались только в качестве тест-культур. Воздействие испытуемой культуры на тест-культуру оценивали как положительное (стимулирующее) или отрицательное (ингибирующее), когда размер колоний тест-культур в опыте был соответственно увеличен или снижен на 20 % и более по сравнению с контролем. Действие испытуемой культуры оценивали как нулевое, если размер колоний в опыте отличался от контрольных не более чем на ±20 %. Контролем служили чашки Петри с тест-культурами, не подвергавшимися действию летучих продуктов жизнедеятельности испытуемых микроорганизмов. Результаты сравнения размеров колоний выражали в миллиметрах. Статистическую обработку данных проводили по Ф.Г. Лакину (1990). Учитывали среднюю арифметическую величину диаметра колоний, ошибку средней арифметической.
Наиболее активный штамм, отобранный с помощью экспресс-метода, в дальнейшем проверяли на активность экзометаболитов в жидкой среде (фосфатно-буферный раствор Петерсона-Кука, 0,1 % глюкоза, pH = 7,2). Динамику роста культуры листерий замеряли на спектрофотометре Т70 UV/VIS Spectrometer PG Instruments Ltd (Англия) при длине волны 590 нм. Наблюдение за ростом вели в течении 11 суток.
Поставленные эксперименты позволили оценить влияние летучих метаболитов сапрофитных бактерий на размножение листерий. Следует отметить, что большинство исследуемых сапрофитных штаммов в той или иной степени стимулировали рост листерий, по сравнению с контролем. Среди них 3 % – отрицательных (случаи, когда летучие метаболиты сапрофитных микроорганизмов подавляют рост испытуемой культуры патогенных бактерий), 90 % – положительных (случаи, когда летучие метаболиты стимулировали рост испытуемой микрофлоры), остальные результаты (7 % случаев) были нулевыми. Наблюдавшиеся в опытах нулевые взаимодействия могут являться слабыми положительными или отрицательными воздействиями, не учитываемыми данным методом исследования.
Наибольшее стимулирующее влияние на рост L. monocytogenes оказал штамм сапрофита, идентифицированный нами как Bacillus pumilus. Летучие метаболиты этого почвенного штамма стимулировали рост всех штаммов L. monocytogenes, взятых в эксперимент, по сравнению с контролем.
Одной из задач данного исследования было подобрать оптимальную концентрацию экзометаболитов B. pumilus в жидкой среде, обладающую максимальным стимулирующим эффектом в отношении роста листерий (штамм 6144 № 315). Для этого использовали рабочие концентрации экзометаболитов бацилл: 0,5; 1; 1,5; 2; 2,5; 3 мл. Биологическое действие экзометаболитов выражали в процентах прироста биомассы по сравнению с контролем.
Следует отметить, что стимулирование роста культуры листерий наблюдали с максимумом на седьмые сутки для всех концентраций экзометаболитов сапрофита.
В результате эксперимента было показано, что экзометаболиты, взятые в концентрации 0,5 мл, в меньшей степени, чем все остальные концентрации, стимулировали рост листерий (на 30 % на седьмые сутки опыта). Стимулирование L. monocytogenes (штамм 6144 № 315) экзометаболитами сапрофита B. pumilus в концентрации 1,5 мл оказалось максимальным среди всех концентраций (на 123 % на седьмые сутки опыта).
Таким образом, установлено, что почвенные бактерии в микробных сообществах с L. monocytogenes, в большей степени стимулируют, чем угнетают рост патогенов. Стимуляция роста L. monocytogenes при взаимодействии с экзометаболитами штамма сапрофита, зависела от концентрации экзометаболитов, от биологических особенностей, как штамма сапрофита, так и штамма листерий. Подобрана наиболее оптимальная концентрация экзометаболитов B. pumilus – 1,5 мл, при которой отмечен максимальный стимулирующий эффект. Метаболиты, продуцируемые почвенной микрофлорой, могут действовать как регуляторы микробных сообществ. В частности, стимулирование роста и размножения L. monocytogenes может способствовать появлению эпидемических очагов, представляющих угрозу для человека.
«Исследование микрофлоры при помощи анализа на бак посев»
В организме человека обитает огромное количество микроорганизмов. Некоторые из них приносят пользу для развития и функционирования систем организма, а некоторое наоборот- вызывают заболевания и нарушают работу органов. Для того, чтобы определить количество микробов, которые заселяют организм и выяснить их патогенность проводят специальный посев на микрофлору или бактериологический посев.
Многие современные тесты (ИФА или ПЦР) не могут дать 100%-ый результат. Только классический посев на флору помогает с точностью идентифицировать тот или иной микроорганизм. Это очень важно для правильной постановки диагноза.
Что из себя представляет бак посев
Посев на микрофлору (бактериологический) — это один из видов микробиологический анализов, который проводят для диагностики инфекционных заболеваний.
Его проводят в специальных лабораториях, микрофлору пациента высевают на питательные среды, которые помещают в термостаты с определенной температурой и длительностью нахождения в нем.
Затем обязательно при выявлении тех или иных микроорганизмов проводят тест на их резистентность к антибиотикам, чтобы подобрать эффективный препарат для лечения заболевания.
Существует множество видов бактериологических посевов. Выделим самые популярные:
Именно во время посева на флору врачи могут получить точный диагноз, который не получалось установить вовремя других типов исследований.
Какие заболевания можно определить при помощи бак посева
Посев на микрофлору проводятся с целью установления присутствия в организме пациента уловной или условно-патогенной микрофлоры, которая провоцирует развитие заболеваний. С помощью такого анализа можно установить:
Норма и расшифровка для бак посева на флору
Расшифровка результатов посева проводится в микробиологической лаборатории. Для этого проводится как качественный, так и количественный подсчет. При количественном расчете используется понятие 4 степеней обсемененности:
При диагностировании 1 или 2 степени зараженности можно говорить о наличии условно-патогенной микрофлоры, как правило, это ещё не говорит о факте развития заболевания. Такой результат можно получить, если больной не соблюдал все необходимые правила подготовки к анализу (нарушил правила забора материала, использовал нестерильную посуду или инструменты, не соблюдал правил личной гигиены).
Однако, если была установлена 3 или 4 степень, то можно с точность утверждать об определенной форме болезни. Именно в этом случае устанавливают конкретные патогенные микроорганизмы, проводят анализ их резистентности к антибиотикам и получив комплексный результат назначают лечение. Этот метод называется антибиотикограмма.
Важно отметить, что во время взятия мазка на микрофлору у беременных женщин могут наблюдаться небольшие превышения нормы. Не стоит беспокоиться из-за этого, нужно через время провести повторный анализ, который покажет либо прекращения роста ранее выявленных микроорганизмов, либо увеличение их количества.
Является достаточно информативным, благодаря нему можно с точностью установить возбудителя, что не удается сделать другими современными методиками. Имея на руках результаты бактериологического исследования врач может подобрать эффективные препараты для лечения того или иного заболевания.
При сдаче биоматериала на анализ очень важно соблюдать все необходимые требования, это поможет повысить точность результатов.
При каких симптомах нужно сдавать анализ
Основными показаниями к проведению посева на флору считаются:
Благодаря бактериологическому посеву можно точно установить возбудителя и подобрать эффективное лечение.
Как подготовиться к сдаче анализа
Очень важно правильно подготовиться к проведению анализа ведь от этого напрямую зависит точного полученных результатов, а значит и дальнейшее лечение. Перед бак посевом рекомендуется:
На заметку! Процедура посева на микрофлору не имеет противопоказаний и является абсолютно безопасной. При беременности такой анализ сдают два раза за весь срок, чтобы исключить возможное инфицирование мамы или ребенка.
Как и для чего проводится бак анализ мочи, как подготовиться к исследованию и как правильно сдавать этот анализ, а также, сколько времени ждать результаты
Как происходит забор материала для анализа
Для проведения бак посева используется следующий биоматериал:
Больной может самостоятельно собрать необходимый материал (если это моча, кал или мокрота) или явится для его забора в лабораторию (мазки из носа, ротовой полости, влагалища, уретры и др.). Все емкости и инструменты должны быть стерильными.
Грудное молоко, мокроту, мочу или кал необходимо самостоятельно доставить в лабораторию в течение 1-2 часов после забора.
Длительность анализа разная и зависит от исходных материалов, которые для него использовались:
Результаты анализа можно узнать в лаборатории, где пациент сдавал свой биоматериал. Точный срок можно узнать у специалистов медицинского учреждения.
Автор: Тайша Әсем Шарафиқызы
ГП на ПХВ Областная инфекционная больница
бактериологическая лаборатория – бак лаборантка
Посев на микрофлору (идентификация агента и чувствительность к а/б)
Описание исследования
Посев отделяемого верхних дыхательных путей
Тестирование позволяет определить возбудителя инфекции и выбрать для лечения наиболее действенный антибиотик.
Достаточно часто причинами болезней верхних дыхательных путей (в частности, ринита или синусита (поражения носа), фарингита (слизистой оболочки горла)), является воздействие микроорганизмов:
Своевременная постановка диагноза с точным определением агента инфекции способствует проведению адекватного лечения, что в свою очередь, не позволяет перейти заболеванию из острой в хроническую форму.
Цель исследования – выявление микроорганизмов:
основных возбудителей инфекции, условно-патогенных бактерий:
представителей нормальной флоры:
Цель тестирования – выделение следующих возбудителей инфекции:
Посев раневого отделяемого и тканей
Результаты данного тестирования используются для назначения эффективного лечения ран с применением антибиотиков.
Часто сложные раны не лечатся должным образом, причиной чему во многих случаях является неправильное назначение антибиотиков.
Достаточно часто гнойно-воспалительные осложнения ран возникают из-за воздействия условно-патогенных бактерий. Однако еще более частыми возбудителями выступают бактерии, которые не нуждаются для нормальной жизнедеятельности в кислороде (частично или полностью). Общее название таких микроорганизмов – анаэробы. Осложнения ран вызывается некоторыми их представительями – грамотрицательными (неокрашиваемыми при проведении характерной реакции окрашивания по Граму) палочками, грамположительными (окрашиваемыми) кокками, не образующими спор палочками. При проявлении одинаковых симптомов осложнения и идентичности обнаруженных бактерий, реакция их на антибиотики у разных людей может иметь существенные различия.
Действенность лечения антибиотиками на данный момент оставляет желать лучшего. Однако точная идентификация микроорганизмов и определение их чувствительности к антибиотикам позволяет сделать процесс намного действеннее.
Цель исследования – выделение следующих возбудителей инфекции:
Важно. При отборе пробы необходимо иметь наготове транспортную среду.
Посев отделяемого (соскоба) из глаза
Исследование проводится с целью выделения следующих возбудителей:
— золотистого стафилококка (Staphylococcus aureus)
— эпидермиального стафилококка (Staphylococcus epidermidis) и некоторых других видов;
— пневмококков (Streptococcus pneumoniae);
— пиогенного стрептококка (Streptococcus pyogenes);
— стрептококка вириданс (Viridans streptococcus);
— кандиды (Candida) (чаще всего);
— кишечной палочки (Escherichia coli)
— нейссерии (Neisseria species);
— протея (Proteus vulgaris);
Посев отделяемого половых органов или соскоба из влагалища, цервикального канала, мочеиспускательного канала
Тест предназначен для идентификации бактерий, вызвавших неспецифическое инфекционно-воспалительное заболевание (т.е. когда агент инфекции, послуживший причиной его возникновения, не известен), и назначения по его результатам действенного лечения с применением антибиотиков.
В нормальном состоянии биоценоз (совокупность микроорганизмов, представляющих микрофлору) мочеполовой системы человека представлен более-менее постоянным, иногда зависящим от возраста, составом. Так, микрофлора влагалища женщин репродуктивного возраста в значительном количестве содержит строгие (облигатные – гибнущие при попадании в кислородную среду) и факультативные (которые могут существовать как с присутствием кислорода, так и без него) анаэробные организмы, большинство из которых – лактобациллы. В значительно меньшей мере его населяют аэробные (нуждающиеся для жизнедеятельности в нормальном содержании кислорода) и микроаэрофильные (которым достаточно сниженной концентрации кислорода) условно-патогенные бактерии. Во внутреннем канале шейки матки и в самой матке бактерии в нормальном состоянии отсутствуют.
Микрофлора девочек, не вступивших в фазу полового созревания, представлена кокками и дифтероидами (грамположительными палочками).
В ближних к наружному выходу отделах уретры (мочеиспускательного канала) здоровых мужчин могут присутствовать небольшие количества грамположительных палочек и кокков. В проксимальных (удаленных от выхода) отделах уретры, простате и семявыводящих канальцах в норме стерильно.
Если нарушается баланс между видами микроорганизмов и/или появляются несвойственные для данного места бактерии, это создает серьезную предпосылку для возникновения инфекционно-воспалительного процесса.
Болезни, характерные для женщин:
Болезни, часто встречающиеся у мужчин:
Результатом исследования является выделение условно-патогенных бактерий (т.е. тех, которые могут являться частью нормальной микрофлоры, но при ослаблении иммунитета становятся возбудителями заболеваний): энтеробактерий, стрептококков, стафилококков, гемофильных палочек, неферментирующих грамотрицательных бактерий, энтерококков, коринеформных бактерий, дрожжеподобных грибов (только констатируется факт их присутствия, виды не определяются).
Внимание! Исследование наличия специфических возбудителей – хламидий (Chlamydia trachomatis), влагалищной трихомонады (Trichomonas vaginalis), бледной спирохеты (Treponema pallidum), гонококка (Neisseria gonorrhoeae) в рамках данного теста не проводятся.
Посев отделяемого из уха
Данный тест предназначен для микробиологической диагностики гнойно-воспалительных заболеваний уха.
Гнойно-воспалительные процессы отличаются локализацией, их могут вызывать различные возбудители. По расположению очага болезни различают поражение:
Причиной заболеваний выступают следующие микроорганизмы:
Для быстрого выздоровления пациента, а также дл предотвращения перехода болезни из острой формы в хроническую, очень важно идентифицировать возбудитель и определить его чувствительность к антибиотикам.
Посев проводится для проверки наличия грамотрицательных бактерий, относящихся к семейству энтеробактерий (Enterobacteriaceae), синегнойной палочки (Pseudomonas aeruginosa), стафилококков, стрептококков (S. pyogenes, S. pneumoniae, S. viridans), коринебактерий, дрожжеподобных грибов, гемофильной палочки (Haemophilus influenzae).
Посев пункционного материала
Целью посева является выделение следующих возбудителей:
Для исследования отбираются пробы:
Посев на анаэробную микрофлору
Цель исследования – обнаружить присутствие микроорганизмов, живущих и растущих без доступа кислорода, при гнойно-воспалительных процессах.
Анаэробные бактерии благополучно живут в организме человека, составляя значительную часть его микрофлоры. Однако определенные условия могут сделать их причиной гнойных воспалений.
Независимо от того, в какой части тела расположен очаг, действие анаэробов не отличаются разнообразием – это гниение и газообразование. Чаще всего мишенью микроорганизмов становятся органы, в которых они обитают, вследствие чего происходит поражение мочеполовой системы, желудочно-кишечного тракта, верхних дыхательных путей. Проведение точной диагностики является жизненно необходимым – только это поможет назначить адекватное лечение и обезвредить инфекцию, представляющую смертельную опасность для организма человека.
Инфекция возбуждается превотеллами, вейлонеллами, клостридиями, пропионобактериями, эубактериями, пептострептококками, актиномицетами, фузобактериями, гемеллами, бифидобактериями, бактероидами, порфиромонадами.
При обследовании проводится тестирование:
Подготовка к исследованию
Отделяемое (соскоб) верхних дыхательных путей
Отбирать материал рекомендуется до приема пищи и питья, полоскания и прочих лечебных манипуляций или через 2 часа (минимум) после еды и питья. Отбор пробы проводится до начала приема антибиотиков, антисептиков, грибковых препаратов. При назначении специфической антибактериальной химиотерапии материал отбирается до ее проведения или не ранее, чем через сутки после введения препарата.
Для хранения и транспортировки отделяемого верхних дыхательных путей используется стерильный медицинский контейнер. До доставки в лабораторию он должен храниться в холодильнике.
Подписывая контейнер, необходимо указать ФИО, дату рождения, дату отбора пробы и откуда она была взята.
Взятие соскоба с задней стенки глотки или полости носа производится специальным тампоном, который помещается затем в транспортную систему со средой Амиеса (перед отбором пробы из носа необходимо удалить сухие корочки).
Тестирование нужно проводить перед применением противомикробных препаратов. Порция желчи, отобранная при операции, наиболее соответствует требованиям, предъявляемым к качеству биоматериала.
Если есть подозрения, что воспаление спровоцировано Клостридией перфрингенс (Clostridium perfringens), бактероидами Фрагилис (Bacteroides fragilis), пептострептококками (Peptostreptococcus sp), то рекомендуется посев на анаэробную микрофлору с определением чувствительности возбудителей к антибиотикам.
Посев раневого отделяемого и тканей
Обследование проводится до начала лечения антибиотиками.
Если у пациента рана от укуса, глубокая угревая сыпь, паронихия (воспаление околоногтевого валика), некротический фасциит (поражение бактериями соединительной оболочки – фасции и подкожной клетчатки), пролежни, газовая гангрена, то перед данным тестированием рекомендуется провести предварительные обследования: посев на анаэробы (бактерии, полностью или частично не нуждающиеся в кислороде) и бактериоскопия мазка на стекле.
При проведении обследования необходимо выполнять следующие требования:
Посев отделяемого (соскоба) из глаза
Отбор отделяемого для исследования производит лечащий врач или сам пациент. Обследование назначается до приема антибиотиков.
Соскоб отбирается с конъюнктивы глаза, с переходной складки при вывернутом верхнем или нижнем веке. Для этого используется специальный тампон, который после отбора пробы помещается в емкость с транспортной средой. При проведении специфической антибактериальной химиотерапии проба отбирается до ее начала или через сутки после введения препарата.
В рамках данного теста не исследуется наличие вирусов и хламидий.
Посев отделяемого половых органов
Проведение обследования на фоне приема антибиотиков не информативно. Материал отбирается до его начала или через полторы-две недели после окончания лечения антибактериальными препаратами или иммуномодуляторами.
Нецелесообразно проводить обследование женщин во время менструации, так как количество микроорганизмов в этот период значительно меньшее, чем обычно. Биоматериал отбирается, начиная с 5-7 дня от начала цикла.
Перед проведением тестирования:
Обследование не проводится после инструментального, мануального, ультразвукового исследований, физиопроцедур, кольпоскопии и прочих манипуляций.
У мужчин исследуется эякулят (сперма). Биоматериал собирается в контейнер с крышкой. Для сбора эякулята не используются:
Это объясняется тем, что вещества, в них присутствующие (используемые при производстве презервативов или оставшиеся в контейнере после дезинфекции) могут повлиять на результат обследования.
До доставки в лабораторию, контейнер с образцом хранится в холодильнике при температуре от +2 до +8⁰С, но не более 10-12 часов. Охлажденный эякулят должен быть доставлен для исследования в день сбора (в качестве «холодильника» при транспортировке может быть использован термос с небольшим количеством льда или пакет с охлаждающими элементами).
Соскоб из мочевого канала (уретры) обирается через 1,5-2 часа после мочеиспускания или перед ним. Отбор пробы рекомендуется проводить до начала специфической антибактериальной химиотерапии или не менее чем через сутки после последнего введения лекарственного средства.
Посев отделяемого из уха; посев пункционного материала
Исследование не целесообразно проводить на фоне лечения антибиотиками, применения антисептиков и противогрибковых средств.
Материал для посева собирается только в стерильные контейнеры.
Транспортные среды перед использованием хранятся в холодильнике. Они подогреваются до комнатной температуры за полчаса до применения. Для каждого вида исследования предназначена особая транспортная среда.
Контейнер (или пробирка) с биоматериалом обязательно подписывается. Необходимо указать фамилию и инициалы пациента, дату рождения, дату, время сбора материала, и откуда взята проба.
Хранение отобранного материала должно производиться согласно требованиям, предъявляемым к режиму и срокам.
Посев на анаэробную микрофлору
Обследование не рекомендуется проводить на фоне антибактериальной терапии.
Посев на аэробные микроорганизмы целесообразно проводить параллельно с посевами на микрофлору в условиях отсутствия кислорода и проведением микроскопического исследования мазка, сделанного отдельным стерильным тампоном на стекле. На бланке направления обязательно делается запись, если исследование предназначено для выявления клостридий (бактерий, живущих и растущих только при отсутствии кислорода) и актиномицетов (микроорганизмов, соединяющих в себе признаки грибов и бактерий).
Показания к исследованию
Посев отделяемого верхних дыхательных путей
Посев раневого отделяемого и тканей
Посев отделяемого (соскоба) из глаза
Тестирование назначается при наличии гнойно-воспалительных заболеваний глаз:
Особую группу риска составляют лица, пользующиеся контактными линзами.
Посев отделяемого половых органов (соскоб)
Посев отделяемого из уха
Показанием к проведению теста является наличие гнойных и негнойных отитов (воспаления уха).
Посев пункционного материала
Тестирование назначается при наличии гнойно-воспалительных заболеваний:
Посев на анаэробную микрофлору
Тестирование рекомендуется проводить:
Интерпретация исследования
Посев отделяемого верхних дыхательных путей
Результат обследования выдается на бланке лаборатории. Пациент получает следующую информацию:
В зависимости от вида обнаруженных возбудителей предлагается перечень противомикробных средств.
Если в результате посева дала рост в незначительном количестве нормальная, условно-патогенная или сопутствующая флора, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.
Данные, предоставляемые пациенту после обследования, содержат следующую информацию:
Выбор антимикробных средств производится в зависимости от идентифицированных бактерий.
Данное обследование не предназначено для определения вида грибов и их чувствительности к антигрибковым препаратам. Если возникает подозрение на грибковую инфекцию, проводится отдельное тестирование (посев на дрожжеподобные грибы).
Норма – желчь стерильна.
При отборе пробы методом дуоденального зондирования не исключено попадание в пробу сапрофитной микрофлоры (т.е. питающейся мертвой, разлагающейся органикой) рта и верхних отделов пищеварительного тракта (глотки, пищевода, желудка).
Если после посева в незначительном количестве дала рост нормальная, условно-патогенная или сопутствующая флора, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.
Посев раневого отделяемого и тканей
После проведения исследования пациент получает следующую информацию:
Противомикробные препараты подбираются в зависимости от вида обнаруженных возбудителей.
Попадание в посев микроорганизмов с кожи может вызвать незначительный рост сапрофитных бактерий.
При наличии заболевания происходит значительный рост бактерий, являющихся его причиной. Высокий титр позволяет диагностировать инфекцию. Количество колоний в таком случае превышает 10 000 КОЕ/тампон.
Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.
Посев отделяемого (соскоба) из глаза
После исследования предоставляются следующая информация:
Выбор антимикробных препаратов, рекомендуемых для проведения лечения, осуществляется исходя из вида выделенных бактерий.
Если есть вероятность грибковой инфекции, то проводится отдельный тест – «Посев на дрожжеподобные грибы».
Результаты интерпретируются следующим образом:
Посев отделяемого половых органов (соскоб)
Информация, предоставляемая после исследования:
Определение антимикробных препаратов осуществляется исходя из вида выделенных бактерий.
Результаты интерпретируются следующим образом:
При выявлении стрептококков Streptococcus agalactiae и Streptococcus pyogenes, являющихся патогенными (вызывающими заболевание), обязательно определяется чувствительность к антибиотикам независимо от количества колоний в единице объема.
Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.
Посев отделяемого из уха
После проведения исследования пациент получает следующую информацию:
Антимикробные препараты назначаются в зависимости от вида обнаруженных возбудителей.
Нормой является отсутствие роста.
Данный тест не предусматривает определение вида грибов и их чувствительности к противогрибковым препаратам.
Если в посев попали микроорганизмы с кожи, то происходит незначительный рост сапрофитных или условно-патогенных бактерий.
Если имеет место заболевание, то происходит рост бактерий, его вызывающих. Количество колоний в таком случае превышает 100 000 кое.
Если в наличие явные признаки заболевания, а рост при посеве отсутствует, целесообразно повторить отбор материала, т.к. он мог быть собран неправильно или на фоне применения антибиотиков.
Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.
Посев пункционного материала
После проведения исследования пациенту выдается следующая информация:
Выбор антимикробных препаратов осуществляется в зависимости от вида выявленных микроорганизмов.
Норма – рост отсутствует.
Если в посеве обнаружено присутствие представителей другой микрофлоры, попавших туда случайно из воздуха, с поверхности кожи или каким-то другим образом, об этом тоже сообщается в описании результатов.
В рамках теста не определяется вид грибов и их чувствительность к противогрибковым препаратам.
Если обнаружен рост сопутствующей, нормальной или условно-патогенной микрофлоры в количестве, не способном вызвать заболевание, то исследование на чувствительность к антибиотикам не проводится.
Посев на анаэробную микрофлору
Результат исследования включает в себя информацию о наличии или отсутствии роста бактерий. Положительный ответ подразумевает дополнительное определение чувствительности к антибиотикам.
Норма: рост при посеве отсутствует.
Результат теста выдается на бланке лаборатории медицинской компании «Наука». Пример по данному анализу представлен ниже:
Ф.И.О.: Иванов Сидор Петрович Пол: м Дата рождения: хх.хх.хххх
Дата исследования: хх.хх.хххх
Исследование
Результат
Нормы интерпретации
Примечание
[411] Посев на микрофлору (идентификация агента и чувствительность к аб)